問答題葡萄糖—卵黃稀釋液的配制。 操作： 1）稀釋液配方：葡萄糖5克、卵黃10毫升、青、鏈霉素各10萬單位蒸餾水100毫升。 2）配制方法：將量好的葡萄糖和蒸餾水溶液混均勻后，過濾、水洗消毒、降溫冷卻后加入卵黃和抗菌素。精液稀釋時有哪些操作要點(diǎn)？

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3.問答題精子密度計數(shù)。 操作： 1）在顯微鏡的低倍鏡下找到計算板的方格、然后調(diào)至高倍，找到某一個中方格，蓋上蓋玻片。 2）稀釋精液，先用白細(xì)胞吸管吸取馬鮮精0.5-1.0處，然后吸取3%的氯NaCL液至刻度11，對精液進(jìn)行10或20倍稀釋。稀釋中無論吸取精液還是NaCL液，管內(nèi)液面只能緩緩上升，不能下降。吸取氯化鈉后，用手指堵住吸管的兩端，振蕩幾次，棄去管內(nèi)精液2-3滴。 3）鏡檢：把稀釋后的精液在蓋玻片與計算室之間滴一小滴，使精液自然充入，推動玻片，找到計算板上某一角的中方格，檢查精子數(shù)目。一般檢查5個中方格內(nèi)的精子數(shù)，即四角和中央的一個中方格。 4）計算：檢查完5個中方格的精子數(shù)以后，按下面公式計算：1ml原精液的精子數(shù)=5個中方格的精子數(shù)×5×10×1000×稀釋倍數(shù)。 本實驗要求做兩次，如果兩次結(jié)果接近。取其平均值。如果兩次結(jié)果差別較大，再做第三次，其結(jié)果與前兩次中哪一次的結(jié)果相近，即與該次精子密度取平均值，做為本次檢查的最后結(jié)果。參考數(shù)據(jù)：馬原精液精子的密度約為1-3億/ml。 5）器械的洗滌：顯微鏡恢復(fù)原始狀態(tài)、裝箱。吸管、計算板等洗滌。擦凈。稀釋精液為什么使用3%的NACL？
4.問答題精子密度計數(shù)。 操作： 1）在顯微鏡的低倍鏡下找到計算板的方格、然后調(diào)至高倍，找到某一個中方格，蓋上蓋玻片。 2）稀釋精液，先用白細(xì)胞吸管吸取馬鮮精0.5-1.0處，然后吸取3%的氯NaCL液至刻度11，對精液進(jìn)行10或20倍稀釋。稀釋中無論吸取精液還是NaCL液，管內(nèi)液面只能緩緩上升，不能下降。吸取氯化鈉后，用手指堵住吸管的兩端，振蕩幾次，棄去管內(nèi)精液2-3滴。 3）鏡檢：把稀釋后的精液在蓋玻片與計算室之間滴一小滴，使精液自然充入，推動玻片，找到計算板上某一角的中方格，檢查精子數(shù)目。一般檢查5個中方格內(nèi)的精子數(shù)，即四角和中央的一個中方格。 4）計算：檢查完5個中方格的精子數(shù)以后，按下面公式計算：1ml原精液的精子數(shù)=5個中方格的精子數(shù)×5×10×1000×稀釋倍數(shù)。 本實驗要求做兩次，如果兩次結(jié)果接近。取其平均值。如果兩次結(jié)果差別較大，再做第三次，其結(jié)果與前兩次中哪一次的結(jié)果相近，即與該次精子密度取平均值，做為本次檢查的最后結(jié)果。參考數(shù)據(jù)：馬原精液精子的密度約為1-3億/ml。 5）器械的洗滌：顯微鏡恢復(fù)原始狀態(tài)、裝箱。吸管、計算板等洗滌。擦凈。為防止精子重復(fù)和漏掉，檢查時要采取什么技術(shù)措施？
5.問答題精子密度計數(shù)。 操作： 1）在顯微鏡的低倍鏡下找到計算板的方格、然后調(diào)至高倍，找到某一個中方格，蓋上蓋玻片。 2）稀釋精液，先用白細(xì)胞吸管吸取馬鮮精0.5-1.0處，然后吸取3%的氯NaCL液至刻度11，對精液進(jìn)行10或20倍稀釋。稀釋中無論吸取精液還是NaCL液，管內(nèi)液面只能緩緩上升，不能下降。吸取氯化鈉后，用手指堵住吸管的兩端，振蕩幾次，棄去管內(nèi)精液2-3滴。 3）鏡檢：把稀釋后的精液在蓋玻片與計算室之間滴一小滴，使精液自然充入，推動玻片，找到計算板上某一角的中方格，檢查精子數(shù)目。一般檢查5個中方格內(nèi)的精子數(shù)，即四角和中央的一個中方格。 4）計算：檢查完5個中方格的精子數(shù)以后，按下面公式計算：1ml原精液的精子數(shù)=5個中方格的精子數(shù)×5×10×1000×稀釋倍數(shù)。 本實驗要求做兩次，如果兩次結(jié)果接近。取其平均值。如果兩次結(jié)果差別較大，再做第三次，其結(jié)果與前兩次中哪一次的結(jié)果相近，即與該次精子密度取平均值，做為本次檢查的最后結(jié)果。參考數(shù)據(jù)：馬原精液精子的密度約為1-3億/ml。 5）器械的洗滌：顯微鏡恢復(fù)原始狀態(tài)、裝箱。吸管、計算板等洗滌。擦凈。血細(xì)胞計數(shù)法檢查精子密度一般在什么時候進(jìn)行？生產(chǎn)單位是否每天都要檢查？